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Expérimentations scientifiques sur le genre Sarracenia

Bonjour à toutes et à tous,

 

Il y a environ deux semaines, un chercheur est venu tout spécialement de Tours pendant plusieurs jours afin de faire des expériences scientifiques sur les Sarracenia de la collection PhagoPhytos à Chambéry en Savoie.

expériences sylvain juin 2017 (2)Image 1 – S. Pincebourde (CNRS) à droite et moi-même à gauche

 

Ce genre de plantes carnivores est particulièrement sous étudié alors que les feuilles sont profondément modifiées afin d’attirer, de capturer et de digérer des insectes. Nous nous sommes alors posés les questions suivantes :

  • Quelles sont les conditions abiotiques (températures principalement) des différentes parties du piège à savoir : zone de digestion, zone cireuse, opercule et extérieur du piège ? Les températures internes sont-elles différentes de celles à l’extérieur ? Cela peut-il jouer un rôle dans l’attraction ou la digestion des proies ?
  • Comment ces feuilles photosynthétisent-elles ? Certaines parties sont-elles exclusivement réservées à la photosynthèse et d’autres au piégeage ?
  • Les conditions abiotiques et la génétique des plantes permettent-elles d’expliquer l’efficacité de la digestion ? Les pièges doivent-ils être stimulés pour produire des enzymes digestives ou le font-ils en continu ?
  • Comment varie le spectre d’absorption des pièges en fonction de leur coloration ?

expériences sylvain juin 2017 (15)Image 2 – Pour chacune des expériences, nous avons choisi un large panel de forme et de coloration allant de vert pomme à rouge pourpre en passant par le blanc.

Des mesures de températures

Nous avons tout d’abord mesuré la température au niveau du liquide digestif en continu sur environ 40 pièges divers et variés. Les plantes étaient toutes situées dans la même partie de la serre afin de ne pas biaiser les résultats. De plus, 3 fois par jour, nous mesurions la température au niveau de la zone cireuse et nous prenions des images thermiques de l’extérieur du piège et de l’opercule. Enfin, des sondes disposées dans la serre ainsi qu’à l’extérieur de celle-ci ont pris la température environnante de manière continue.

Nous avons récolté un nombre très importants de données qu’il faudra traiter et analyser pour dire s’il y a réellement une différence entre la température extérieure et intérieure des pièges. Néanmoins, les premiers résultats semblent montrer qu’il fait en moyenne plus chaud à l’intérieur des pièges qu’à l’extérieur, la partie la plus chaude étant le fond du piège au niveau de la zone de digestion. De plus, les plantes rouges semblaient plus chaudes que celles qui étaient vertes.

expérience sylvainexpériences sylvain juin 2017 (10)Images 3 et 4 – les sondes de températures utilisées

Si ces résultats sont avérés, nous pouvons nous demander quelle est la température optimale pour la digestion des proies, et s’il y a une raison particulièrement pour que l’intérieur des pièges soit plus chaud que l’extérieur. Cela pourrait permettre de mieux attirer les insectes en dégageant de la chaleur ou en émettant les molécules volatiles odorantes plus efficacement.

 

Une photosynthèse particulière ?

Chez les Sarracenia, le limbe de la feuille (organe normalement plat et photosynthétique) est l’opercule et le tube est en fait le pétiole (partie normalement rigide liant le limbe à la tige). Nous avons donc étudié l’activité photosynthétique des opercules de différentes espèces aux colories variées. Sans grande surprise, nous avons remarqué que les opercules verts (pure ou veiné) photosynthétisent plus que ceux de couleur rouge, eux-même photosynthétisant plus que les opercules blancs (S. leucophylla) qui sont proches de 0.

expériences sylvain juin 2017 (6)Image 5 – Une grosse machine mesurant l’activité photosynthétique des plantes.

Néanmoins, nous avons poursuivi l’étude aux tubes mais aussi aux phyllodes et aux ailes, cette partie feuillue du tube. Surprise, alors que les tubes ne semblent pas photosynthétiser beaucoup (tout comme les opercules dont la valeur étaient globalement basse), les ailes et les phyllodes avaient une activité photosynthétique jusqu’à 2 fois plus importantes.

Ces résultats restent à confirmer mais cela expliquerait les différents développements des pièges : chez certaines espèces, ils sont d’abord ailés puis bien formés (S. leucophylla, alata), chez d’autres, c’est l’inverse (S. flava, oreophila). Cela pourrait provenir de la priorité accordée par la plante à la photosynthèse (pièges ailés qui capturent peu de proies mais font de la photosynthèse) ou à la carnivorie (pièges bien formés mais peu photosynthétiques). Cela pourrait même être lié à la qualité du sol : s’il est « riche » en nutriments, la plante va plutôt faire de la photosynthèse, mais s’il est pauvre, la plante va favoriser la carnivorie. Tant de nouvelles questions en perspective !

expériences sylvain juin 2017 (14) (1)Image 6 – Mesure de la photosynthèse

Quid de la digestion et de l’absoption UV ?

Pour mesurer la digestion des plantes, nous les avons nourries avec des larves de drosophile. Nous avons récupéré ces larves après deux jours et je récupérerai le reste après deux semaines et deux mois pour voir la vitesse et l’efficacité de digestion en fonction de la taille des pièges, de leur forme, leur couleur et de l’espèce.

J’avais bouché certains des pièges avant l’expérience afin de les laisser vierges jusqu’à l’ajout de proies. L’idée est de savoir s’ils ont besoin d’être stimulé pour produire des enzymes digestives. Dans ce cas, les pièges qui n’étaient pas bouchés (avec donc potentiellement quelques proies à l’intérieur) devraient digérer plus rapidement les larves car les enzymes sont déjà présentes dans le tube.

Concernant l’absorption lumineux, nous avons remarqué une nette différence, prévisible, entre les plantes vertes et rouges. Néanmoins, certaines plantes particulièrement pourpres semblaient absorber beaucoup dans l’Ultra Violet (UV) qui est une longueur d’onde connue pour être vue par… les insectes ! Les plantes aux pièges rouges foncés ont donc une activité photosynthétique moindre que celles aux pièges verts, mais pourraient capturer plus d’insectes en rayonnant dans l’UV.

frt04 juin 2017 (2)Image 7 – Ce tube est si foncé que les veines apparaissent presque bleu… Et pour cause, cette plante rayonne dans l’ultra violet (Sarracenia flava var rubricorpora).

 

Beaucoup de données et beaucoup de questions sans réponse, pour l’instant. L’analyse de toutes les données va prendre du temps et nous espérons à terme pouvoir mettre en lumière certains procédés physiologiques des plantes carnivores, les sacrifices et coûts qu’engendre la carnivorie dans le règne végétal.

 

Affaire à suivre donc…

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4 hybrides PhagoPhytos officialisés

C’est avec un grand plaisir que je vous annonce la parution officielle de 4 hybrides Phagophytos dans la dernière revue de l’International Carnivorous Plant Society (website : http://www.carnivorousplants.org/) de Septembre 2015 !

Les hybrides concernés sont :

 

Description officielle (Vol. 44, Septembre 2015)

    I bought this cute hybrid in 2006 from a French carnivorous plant specialist called “Damien Chertier” who used to sell plants. The parents are unknown.

    This little Sarracenia, which rarely exceeds 35 cm in height, possesses red-veined yellowish pitchers at opening, which become all red very fast (Figs. 6 & 7), arranged in a rosette around the rhizome. The small flower with red-to-purple petals and sepals is borne on a peduncle 45 cm high (Fig. 7). The plant produces a lot of pitchers during the growth season but seems to divide very little, usually once a year during spring.

      Sarracenia ‘Amphibien’ may be the result of a very complex crossing between Sarracenia psittacina, S. purpurea, and S. alata, but it is still unclear as the shape of the pitchers is very different from other hybrids.

      The name “Amphibien” (amphibian in English) comes from the particular shape of the opening pitcher that reminds me a croaking frog. This plant should be reproduced only by vegetative means to ensure that its unique characteristics are maintained.

Photos
Avril 2014
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Mai 2014
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Septembre 2014
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Description officielle (Vol. 44, Septembre 2015)

      I obtained this hybrid from a French carnivorous plant specialist called “Damien Chertier” who used to sell carnivorous plants. He didn’t remember the origin of the parents.

      Sarracenia ‘Elvis Presley’ is a green yellowish plant wearing delicate red veins on glabrous pitchers at the beginning of the growth season, which become finely pubescent at the end of it (Figs. 1 & 2). The pale yellow flower that blooms in spring is a little bit taller than the pitchers and is difficult to pollinate. Indeed, I have almost never got seeds from this hybrid, or only a few sterile ones. Just before winter, the plant produces some curved phyllodes toward the ground which could suggest Sarracenia oreophila heritage. It grows fast and multiplies easily.

      The specific name “Elvis Presley” comes from the particular shape of the lid with its wound spur, which reminds me the hairstyle of the famous rock ’n’ roll singer Elvis Presley.

      This hybrid may be the result of complex crossing between Sarracenia oreophila, S. flava, and S. alata. This plant should be reproduced only by vegetative means to ensure that its unique characteristics are maintained.

 

Photos
Avril 2014
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Mai 2014
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Septembre 2014
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Description officielle (Vol. 44, Septembre 2015)

      I found this plant in Marcel Lecoulfe’s greenhouse in 2005 without a label. The seller told me it was a special variety of Sarracenia rubra, which is impossible given the shape and color of the pitchers and the flowers.

      The plant is 60 cm tall bearing initially orange pitchers which quickly turn red, copper, and purple (Figs. 1 & 2). The underside of the lid is pubescent. The flower is large, with bright yellow bracts and sepals (Fig 2) that tend to become copper as the season progresses. The first spring pitchers are usually aborted, very small and broadly winged, but they become better shaped during the summer. This plant doesn’t produce a lot of well-formed pitchers.

      I called this plant “Rubis Rare” (rare ruby) because of the completely red to purple color of the few pitchers at the end of the growth season.

      This hybrid is probably complex, but has certain characteristics of S. purpurea. Nevertheless, its yellow flower and red pitchers indicate a probable crossing with S. flava var. rubricorpora or var. atropurpurea or with S. alata var. nigropurpurea.

Photos

Juillet 2014
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Septembre 2014
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Description officielle (Vol. 44, Septembre 2015)

  I made this hybrid between Sarracenia ’Rubis Rare’ × (× mitchelliana) in 2008, but I didn’t take care of the seedlings until 2013. Indeed, one was larger than all the others, which increased my interest in this crossing. I transplanted it to a large pot and, the year after, it was showing all its characteristics.

      The size of the pitchers and the lids are amazingly huge and the plant produces a lot of traps that sometimes fall down under their own weight. At first, pitchers are heavily veined and well colored, but after some weeks they become entirely red (Figs. 1 & 2). The pure yellow flower appears during spring (Fig. 3) and might be smaller than the pitchers. Sarracenia ‘Dantadelle’ produces a lot of sweet nectar, grows fast from very early spring until very late summer.

      I have selected this particular clone because it was clearly bigger and different from the other seedlings of the same breeding. I gave it the name “Dantadelle” because of an old bet with friends during my bachelor’s degree; I promised them that I will give my first interesting hybrid this name. This cultivar should be reproduced only by vegetative means to ensure that its unique characteristics are maintained.

Photos
Avril 2014
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Mai 2014
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Septembre 2014
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La fleur en Avril 2015
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Vous pouvez retrouver le PDF de la version officielle ici :

http://www.carnivorousplants.org/cpn/articles/CPNv44n3p156_163.pdf

 

 

Enjoy !

Les interactions plantes-animaux chez les plantes carnivores

Les interactions plantes-insectes et plantes-animaux en général sont très importants pour le fonctionnement et la stabilité des écosystèmes.

En effet, les plantes « utilisent » les animaux pour plusieurs mécanismes. Tout d’abord, les insectes pollinisent les fleurs des Angiospermes pour  leur reproduction et certains animaux dispersent leurs graines par tout un tas de mécanismes (consommation des fruits, fouissage des graines par les fourmis etc.) permettant ainsi leur implantation durable. En contre partie, les animaux peuvent se nourrir du nectar des fleurs et/ou de la pulpe des fruits charnus par exemple, c’est le principe d’interaction mutualiste.

Sans ces interactions, les écosystèmes auraient un fonctionnement totalement différent et nous ne profiterions pas des services écosystémiques qu’ils nous rendent actuellement (pollinisation des fruits que l’on consomme par les abeilles, régulation du climat, maintien de la structure du sol par les racines, production de dioxygène, stockage du gaz carbonique etc.).

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Abeille pollinisant une fleur de lavande (Lavandula sp)

 

Les plantes carnivores entretiennent de nombreuses interactions avec les insectes, et pas seulement de la prédation passive. Il existe en effet plusieurs cas de mutualisme que nous allons détailler.

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Captures d’un Sarracenia hybride.
  • Araignées et Sarracenia

Dans leurs milieux naturels, certaines araignées, notamment l’araignée lynx (Oxyopidae), profitent de l’attraction des insectes par les Sarracenia pour tisser leur toile à l’entrée du piège ou à proximité de ce dernier augmentant ainsi ses chances de capturer des proies. La plante produisant plusieurs pièges ne se voit pas impactée par ce petit désagrément qui ne dure guère plus de quelques semaines en général. Ces mêmes araignées sont aussi capables d’entrer dans le piège d’un Sarracenia sans glisser sur les parois afin d’aller chercher leur repas dans l’antre de la plante carnivore.


Araignée lynx postée à l’entrée du piège d’un Sarracenia leucophylla.

Ce genre de phénomène est aussi régulièrement observé en culture et il n’est pas rare que des araignées tissent leur toile à proximité des urnes redoutablement attractives pour les insectes.

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Toile d’araignée au dessus d’un pied de Sarracenia.

D’autres interactions mutualistes sont observables comme par exemple ce papillon qui profite du nectar des Sarracenia sans risquer de se faire piéger grâce sa taille.

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Papillon se délectant du nectar d’un Sarracenia flava var ornata.
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Papillon se délectant du nectar d’un Sarracenia « Laurissia ».

 

 

  • Punaises et Roridula

Le Roridula gorgonias est une plante protocarnivore, cela signifie qu’elle est capable d’attirer et de capturer une proie mais ne produit pas d’enzymes digestives. Dans son milieu naturel en Afrique du Sud, cette plante héberge une petite punaise (Pameridea marlothii) qui vit sur ces feuilles et qui arrive à éviter les tentacules engluées d’une résine extrêmement collante, plus encore que celle du genre Drosera. Cette punaise se nourrit exclusivement des proies capturer par le Roridula et, en contre partie, ses déjections très riches en azote sont directement assimilées par les feuilles de la plante, lui permettant ainsi une meilleure croissance.


Roridula gorgonias en culture.

On lit souvent, à tord, que cette relation est une parfaite symbiose entre la plante et l’insecte. En réalité, il s’agit d’une interaction mutualiste car la plante peut survivre sans la présence de cette punaise, et vise versa, ce qui n’est pas le cas dans une réelle relation symbiotique où les deux organismes sont interdépendants pour leur survie (algues et champignons chez le lichen par exemple).


Pameridea sp attaquant une drosophile piégée par un Roridula gorgonias. Ses grandes pattes lui permettent de ne pas se faire engluer par la plante carnivore.

 

  • Les interactions des Nepenthes

Les Nepenthes sont sans aucun doute les espèces qui entretiennent le plus de relations mutualistes avec les animaux. Il existe de très nombreux exemples mais nous n’aborderons ici que quelques uns d’entre-eux.

Commençons par Nepenthes albomarginata, reconnaissable par la ligne blanche qui entoure l’entrée de son piège.


Gros plan sur l’entrée du piège de Nepenthes albomarginata.

Cette structure est en fait composée de millier de petits trichomes qui sécrètent une substance très appétante pour les termites. Ces dernières sont attirées jusqu’au piège où elles peuvent se nourrir à volonté. En contre partie de la production de nourriture spéciale termite (coûteuse en énergie), certaines d’entre-elles tombent malencontreusement dans le piège, nourrissant ainsi la plante.


Termites se nourrissant sur le piège de Nepenthes albomarginata.

 

D’autres espèces nouent une relation mutualiste avec des grenouilles. Ces dernières sont capables de ne pas glisser à l’intérieur du piège et, un peu comme l’araignée lynx avec les Sarracenia, elles se postent à l’intérieur de l’urne en attendant que les proies arrivent, la plante digère alors ses excréments riches en azote.


Grenouille attendant patiemment l’arrivée de proies.

Chez Nepenthes ampullaria, une espèce de grenouille (Microhyla nepenthicola) pond directement ses œufs à l’intérieur de l’urne. Les petits têtards, qui ne se font pas digérer par le piège, peuvent alors se développer en toute sécurité à l’abris des prédateurs et la plante assimile une fois encore leurs rejets azotés.


Têtards de Microhyla nepenthicola profitant de l’abris d’un Nepenthes ampullaria.

 

Les abris qu’offrent les urnes de Nepenthes attirent aussi de plus gros animaux tel que des chauve-souris. En effet, Nepenthes rafflesiana elongata propose un abris de choix pour ces mammifères en les protégeant des prédateurs et du soleil de la journée. Ainsi, ces petites chauves-souris passent leur journée à l’intérieur du piège et la plante digère une nouvelle fois ses excréments.


Interaction mutualiste entre une chauve souris et Nepenthes rafflesiana elongata.

 

Enfin, la plante aux pièges géants (plus de 5 litres de contenance parfois), Nepenthes rajah, produit une substance sucrée en quantité impressionnante sous son opercule qui attire de petits mammifères. La forme du piège est telle que l’animal est obligé de se positionner juste au dessus de l’entrée de l’urne, ainsi, tout en consommant sa nourriture sous l’opercule, ses déjections tombent directement au fond du piège et sont assimilées par la plante. Ce type d’interaction est aussi observé chez Nepenthes lowii.


Petit mammifère sur une urne de Nepenthes rajah.

Petit mammifère sur une urne de Nepenthes rajah.
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Petit mammifère sur une urne de Nepenthes lowii.

Petit mammifère sur une urne de Nepenthes lowii.

 

 

 

Il existe encore énormément d’intéractions mutualistes de ce genre chez les plantes carnivores et des études sont actuellement lancées afin de mieux les cerner (en particulier chez les Nepenthes). N’oublions pas au passage que certaines plantes carnivores du genre Heliamphora ou encore Darlingtonia ne sont capables d’assimiler l’azote de leurs proies uniquement grâce à un mutualisme avec des bactéries qui digèrent les insectes pour elles ; c’est d’ailleurs en partie ce qu’il se passe dans la digestion des Hommes (flore intestinale) et des animaux en général.

 

 

Enjoy !

 

 

Source photo : wikipedia & google images (pour celles qui n’ont pas la source écrite).
Un article pour aller plus loin : http://rsbl.royalsocietypublishing.org/content/early/2011/01/21/rsbl.2010.1141.full

Sarracenia et fleur d’Araceae, un exemple du principe de Convergence Evolutive

La convergence évolutive est un mécanisme qui pousse des espèces n’ayant pas de parenté proche à développer un phénotype similaire car leur environnement leur impose des contraintes similaires. En d’autres termes, des plantes éloignées génétiquement peuvent avoir tendance à se ressembler morphologiquement car elles subissent des pressions identiques pour une certaine fonction.

 

Prenons un exemple concret. La plante ci-dessous est un Arisaema ciliatum (de la famille des Araceae) aussi appelé « Cobra lily », tout comme le Darlingtonia californica, qui signifie « Lys Cobra ». La forme de la fleur ressemble étrangement aux pièges de Sarracenia ou aux « uppers » de certains Nepenthes, et cela n’est pas une coïncidence.

Arisaema ciliatum chez Pépinière des Avettes

 

Cette fleur, appelée Spathe, a beaucoup de point commun avec nos plantes carnivores car sa fonction est la même. En effet, elle « piège » les insectes à la base du spadice (excroissance au centre de la fleur portant les organes reproducteurs – pollen et/ou pistil-) qui ne peuvent ressortir sans être couvert de pollen, parfois plusieurs jours plus tard.

L’attraction des insectes à la base du spadice est une pression évolutive qui a sélectionné le phénotype que nous voyons actuellement, c’est à dire une forme tubulaire, une sécrétion d’odeurs particulières, un opercule pour ne pas que la pluie ne remplisse le spathe et le casse… Un peu comme les Sarracenia et les Nepenthes.

Nepenthes rafflesianaHebergeur d'image
Nepenthes rafflesiana & Sarracenia leucophylla x « Juthatip soper »

 

Ce mécanisme est aussi celui à la base des différentes familles de plantes carnivores utilisant des pièges à glu. Le substrat étant pauvre, les individus pouvant sécréter du mucilage ont été sélectionné car cela leur apportait un avantage certain sur les autres. C’est pour cela que des genres assez éloignés génétiquement comme les Drosera, les Pinguicula ou encore les Byblis (voir arbre phylogénétique ci-dessous) ont développé des pièges à glu, car les pressions environnementales étaient les mêmes.
arbre phylogénétique
Enjoy !

 

crédit photo :

http://www.promessedefleurs.com/

http://nepenthes.merbach.net/

http://www.cafe-sciences.org/

4 nouvelles espèces de Nepenthes découvertes aux Philippines

Les Philippines possèdent la plus grande diversité spécifique du genre Nepenthes (Gronemeyer et al, 2014) en regroupant à ce jour une cinquantaine d’espèce. Quatre nouvelles ont été ajouté récemment et publiées dans un article paru le 6 Juin 2014.

 

  • Nepenthes pantaronensis (Gieray, Gronem., Wistuba, Marwinski, Micheler, Coritico, V.B.

Amoroso, spec. nov)

Cette plante semble apparentée à Nepenthes pulchra et Nepenthes petiolata.

 

 

  •  Nepenthes cornuta  (Marwinski, Coritico, Wistuba, Micheler, Gronem., Gieray, V.B.Amoroso, spec. nov)

Une espèce de plus à ajouter au complexe Nepenthes alata.

 

  • Nepenthes talaandig  (Gronem., Coritico, Wistuba, Micheler, Marwinski, Gieray, V.B.Amoroso,
    spec. nov.)

Très proche de Nepenthes cornuta, elle appartient aussi au complexe Nepenthes alata.

 

  • Nepenthes amabilis (Wistuba, Gronem., Micheler, Marwinski, Gieray, Coritico, V.B.Amoroso,

spec. nov.)

Elle semble très proche de Nepenthes pantaronensis.

 

Référence :

Gronemeyer T., Coritico F., Wistuba A., Marwinski D., Gieray T., Micheler M., Sockhom Mey F., Amoroso V.. Four new species of Nepenthes L. (Nepenthaceae) from the central mountains of Mindanao, Philippines. Plants, 2014, 3(2) : 284-303.

http://www.mdpi.com/2223-7747/3/2/284

Clef de détermination du genre Sarracenia

Clef de Détermination du genre Sarracenia

Juin 2013

 

Cette clef comporte toutes les nouvelles sous espèces (ssp), variétés (var) et formes (f) du genre Sarracenia ainsi que les anciennes. À la page (2) se trouve une clef de détermination à l’espèce, il faut ensuite se rendre à la page indiquée entre parenthèse afin d’obtenir une identification complète. Certaines sous espèces, notamment chez Sarracenia rubra, possèdent des différences phénotypiques peu observables, même si elles n’ont pas la même aire de répartition dans leur milieu naturel. Certaines variétés géantes ( Sarracenia minor var okefenokeensis et Sarracenia psittacina var okefenokensis) n’ont à proprement parlé que la taille qui diffère, il paraît donc difficile d’identifier de jeunes plants plus précisément qu’à l’espèce.

 Pour toutes remarques ou suggestions n’hésitez pas à me contacter par mail à l’adresse suivante : ventecarni@gmail.com

 


 

 

  

Clef de détermination à l’espèce chez Sarracenia

-Plante prostrée          

            oui ……………………………………………………………………………………….. II

            non……………………………………………………………………………………….. I

 

I] Plante non prostrée, port érigée

-Ocelles blanches        

            oui ……………………………………………………………………………………………2

            non …………………………………………………………………………………….suite

 

-opercule                    

           arrondi…………………………………………………………………………………………..1

            en pointe …………………..……………………………………………. ……………suite

 

-fleur               

                  + 5cm, pétales jaunes pâles virant sur le blanc ………………………alata

                 – 5cm, pétales rouges ou jaune virant sur le vert …………………….rubra

 

1) Opercule arrondi

-Phyllodes       

            prostrés, apparition en automne, courts (touchent le sol), arrondis….oreophila

            inexistants ou apparition en automne, érigés (taille similaire aux pièges)…flava

 

2) Présence d’ocelles blanches

-opercule

            arrondi, ondulé, poils sur la surface inférieure………………………leucophylla

            en pointe, lisse, pas ou peu de poils …………………………………………….minor

 

II] Plante prostrée, pièges disposés en rosette

-piège

            ouvert (retenant la pluie), poilu……………………………………………..purpurea

            fermé, présence d’ocelles blanches……………………………………….psittacina

 

 

 

 

 

 


 

 

 

Sarracenia alata

-Coloration du feuillage dans le cas d’une exposition lumineuse adéquate (les plantes d’ombre sont en effet tout le temps vertes)

            vert…………………………………………………………………………………………….suite

            entièrement rouge………………………………………………………..var. atrorubra

            au moins partie supérieure pourpre/noir……………….var. nigropurpurea

 

-Coloration de l’opercule dans le cas d’une exposition lumineuse adéquate

            vert en dessous comme en dessus pouvant virer sur le jaune ………………………suite

            rouge en dessous mais vert pouvant virer sur le jaune en dessus……..var. rubrioperculata

            cuivré sur le dessus mais vert pouvant virer sur le jaune en dessous….var. cuprea

-Ornementation dans le cas d’une exposition lumineuse adéquate

            réseau de veines rouges/pourpre à l’extérieur du tube dans sa partie postérieure voire dessus et dessous l’opercule …………………………………………………….var. ornata

            peu ou quelques veines plutôt parallèles à l’intérieur du tube dans sa partie postérieure, dessous de l’opercule peut être légèrement veiné……………….var. alata

            aucune veine rouge ni coloration rouge ……………….var. alata f. viridescens

 

 


 

 

 

Sarracenia flava

-Couleur et ornementation du feuillage à l’extérieur des tubes dans une exposition lumineuse adéquate

            rouge…………………………………………………………………………………………………..I

            complètement verte, sans aucune veine………………………………………………..II

            vert virant sur le jaune avec plus ou moins de veines rouges………………..III

 

I] feuillage rouge sur l’extérieur des tubes

 

-Couleur de l’opercule, de l’intérieur & de l’extérieur des pièges uniforme entièrement rouge

            oui……………………………………………………………………………var. atropurpurea

            non…………………………………………………………………………….var. rubricorpora

 

 

II] feuillage complètement vert sur l’extérieur des tubes

-Grosse tâche rouge présente dans la gorge

            oui………………………………………………………………………………………..var. rugelii

            non………………………………………………………………………………………………….suite

 

-Attache du pétiole au rhizome/partie inférieure de la plante/jeunes pousses rouge

            oui…………………………………………………………………………………..var. maxima

            non………………………………………………………………….var. flava f. viridescens

 

III] feuillage vert virant sur le jaune, plus ou moins veiné

-Partie supérieure de l’opercule cuivré

            oui………………………………………………………………………………………var. cuprea

            non………………………………………………………………………………………………..suite

 

-Ornementation (veines rouges)

            très prononcée à l’extérieur et à l’intérieur du tube ainsi que sur les deux faces de l’opercule, veines organisées en réseau……………………………………………var. ornata

            inexistante ou peu visible à l’extérieur du tube, veines assez parallèles situées dans la gorge du piège et parfois à l’intérieur de celui-ci………………………………var. flava

 

 


 

 

 

 

Sarracenia leucophylla

-Présence d’anthocyanine, plante colorée (plus ou moins) de rouge, fleur rouge

            oui………………………………………………………………………………………………….suite

            non……………………………………………………..var. leucophylla f. viridescens

 

-Ornementation à l’ouverture du piège (péristome et gorge) ainsi qu’à l’intérieur de celui-ci

            identique au reste de la partie supérieure du tube…………..var. leucophylla

            Absente ou nettement moins prononcée que le reste de la partie supérieure du tube ce qui rend cette zone complètement blanche ………………………………………..var. alba

 

 


 

 

 

Sarracenia minor

-Présence d’anthocyanine, présence d’une coloration rouge sur au moins une partie de la plante

            oui ……………………………………………………………………………………….suite

            non……………………………………………………………..var. minor f. viridescens

 

-Rapport de la taille totale du piège et de sa largeur à l’ouverture

            >10……………………………………………………………………var. okefenokeensis

            <10…………………………………………………………………………………..var. minor

 

 


 

 

 

Sarracenia oreophila

-Ornementation

            quelques veines à l’intérieur du tube dans sa partie supérieure…..var. oreophila

            veines organisées en réseau et présentes sur l’ensemble du feuillage (à l’extérieure et à l’intérieure du piège ainsi que dessous et dessus l’opercule)………….var. ornata

 

 


 

 

Sarracenia psittacina

 

-Rapport entre la longueur total d’un piège et sa largeur maximal au niveau de l’entrée de celui-ci

            >3,5 ……………………………………………………………………………………………….I

            <3,5 ………………………………………………………………………………………………..II

 

I] Rapport >3,5 (var psittacina)

-Présence d’anthocyanine, coloration rouge au moins une partie de la plante, fleur rouge

            oui………………………………………………………………………………….var. psittacina

            non………………………………………………………….var. psittacina f. viridescens

 

II] Rapport <3,5 (var okefenokeensis)

-Présence d’anthocyanine, coloration rouge au moins une partie de la plante, fleur rouge

            oui……………………………………………………………………….var. okefenokeensis

            non………………………………………………..var. okefenokeensis f. luteoviridis

 

 


 

 

 

Sarracenia purpurea

-Pilosité à l’extérieur du piège

            absente, piège glabre/lisse……………………………………………………………………….I

            très présente……………………………………………………………………………………………II

 

I] Piège glabre à l’extérieur (ssp purpurea)

– Coloration rouge au moins présente une fois dans la plante, fleur rouge/pourpre

            oui…………………………………………………………………………..ssp. purpurea

            non…………………………………………………..ssp. purpurea f. heterophylla

 

II] Piège pubescent à l’extérieur (ssp. venosa)

-Coloration de la fleur

            jaune pâle virant sur le vert…………………………………………………………………1

            rouge/pourpre………………………………………………………………………………suite

            rose avec un disque stylaire blanc …………………ssp. venosa var. burkii

 

-Opercule

            peu ou pas ondulé du tout, parfois veines rouges sur fond vert virant sur le jaune, les deux extrémités se touchent devant l’entrée du piège….ssp. venosa var. montana

            ondulé, généralement coloré de rouge, bien ouvert laissant clairement apparaître l’entrée du piège………………………………………………………..ssp. venosa var. venosa

 

 

1) Feuillage et fleur vert virant sur le jaune pâle

-couleur des pétales et sépales

            sépales jaunes et pétales complètement blancs……..ssp. venosa var. burkii f. luteola

            sépales et pétales verts virant sur le jaune pâle……….ssp. venosa var. venosa f. pallidiflora

 

 


 

 

Sarracenia rubra

 

-Opercule plus large que long ………………………………………………………………………….I

-Opercule plus long que large…………………………………………………………………………..II

 

 

I] Opercule plus large que long

-Situation de la largeur maximum de l’entrée du piège

            Au milieu (forme légèrement en losange)…………………………………ssp wherry

            au niveau de l’insertion de l’opercule…………………………………….ssp gulfensis

 

 

II] Opercule plus long que large

-Distance maximum de l’opercule par rapport au péristome deux fois plus grande que la longueur de l’entrée du piège

            Oui……………………………………………………………………………….ssp alabamensis

            Non………………………………………………………………………………………………suite

 

-Valeur du rapport : l/(L²) avec l=largeur de l’entrée du piège L=longueur de l’entrée du piège

            >0,6……………………………………………………………………………………..ssp jonesii

            <0,6……………………………………………………………………………………..ssp rubra